Revista Industria Cosmética - Número 29

tratamiento con SRHC tipo XVII al 0,1%, pudimos observar un aumento significativo en el nivel de expresión de proteínas relacionadas con la membrana basal, incluyendo colágeno tipo IV, tipo VII, tipo XVII, ITGβ4, ITGα6, Lamin y Nidogen (Fig.3C), indicando que SRHC tipo XVII tendría una gran eficacia en la reparación de la DEJ dañada. Así pues, adoptamos un modelo de tejido cutáneo ex vivo para confirmar esta conjetura. Utilizamos la tecnología de tinción de inmunofluorescencia y descubrimos que el tratamiento con un 0,1%de SRHC tipo XVII podría aumentar en gran medida el nivel de expresión del colágeno humano tipo XVII (Fig. 3D). Además, después del daño UV, hubo ruptura en la membrana basal, pero el tratamiento de 0,1%SRHC tipo XVII podría reparar el daño de la unión dermoepidérmica (UDE) y la UDE estaba intacta (Fig.3E) Referencias bibliográficas 1. Sorushanova, A., et al., The collagen suprafamily: from biosynthesis to advanced biomaterial development. Advanced materials, 2019. 31(1): p. 1801651. 2. Matinong, A.M.E., et al., Collagen extraction from animal skin. Biology, 2022. 11(6): p. 905. 3. Duan, H., et al., New strategy for expression of recombinant hydroxylated human-derived gelatin in Pichia pastoris KM71. Journal of agricultural and food chemistry, 2011. 59(13): p. 7127-7134. 4. Mullins, R.J., C. Richards, and T. Walker, Allergic reactions to oral, surgical and topical bovine collagen: Anaphylactic risk for surgeons. Australian and New Zealand journal of ophthalmology, 1996. 24(3): p. 257-260. 5. Sakaguchi, M., et al., IgE antibody to fish gelatin (type I collagen) in patients with fish allergy. Journal of allergy and clinical immunology, 2000. 106(3): p. 579-584. 6. Ricard-Blum, S., The collagen family. Cold Spring Harbor perspectives in biology, 2011. 3(1): p. a004978. 7. Liu, N., et al., Stem cell competition orchestrates skin homeostasis and ageing. Nature, 2019. 568(7752): p. 344-350. 8. Matsumura, H., et al., Hair follicle aging is driven by transepidermal elimination of stem cells via COL17A1 proteolysis. Science, 2016. 351(6273): p. aad4395. 9. Nykvist, P., et al., The cell adhesion domain of type XVII collagen promotes integrin-mediated cell spreading by a novel mechanism. Journal of biological chemistry, 2001. 276(42): p. 38673-38679. 10. Idiris, A., et al., Engineering of protein secretion in yeast: strategies and impact on protein production. Applied microbiology and biotechnology, 2010. 86: p. 403-417. Figura 3. Prueba de eficacia de las SRHC de tipo XVII como materias primas para Cosméticos A. Migración celular y actividad de adhesión de las células NIH/3T3. B. Niveles de expresión del gen AQP3 en células HaCat y de los genes MMP3 y MMP9 en células HFF-1 normalizados respecto a GAPDH cuantificados por qPCR. C. Niveles de expresión de genes relacionados con el basamento, incluyendo colágeno tipo IV, tipo VII, tipo XVII, ITG β 4, ITG α 6, lamin y Nidogen normalizados a GAPDH cuantificados por qPCR. D. Resultados de la inmunofluorescencia del colágeno tipo XVII expresado en las células HaCat en la membrana basal. E. Imágenes de microscopio electrónico de transmisión (TEM) de la unión dermo- epidérmica. SRHC Type XVII Native human collagen BSA A Migration activity ×100% (a.u.) Cell migration activity of NIH/3T3 OD 492 (a.u.) Cell adhesion activity of NIH/3T3 B Without treatment Treatment with SRHC Type XVII C D Blank control Negative control Positive control 0.1% SRHC Type XVII E Blank control Negative control Positive control 0.1% SRHC Type XVII Without treatment Treatment with SRHC Type XVII 78 INDUSTRIA COSMÉTICA 029 SEP/OCT 2023 biotecnología cosmética